武大/上交大瞿旭东组Angew | 甾醇降解途径中双功能还原酶的破译助力重要甾体药物前体高产

4-雄烯二酮(4-AD)和黄体酮(PG)是众多甾体类药物的重要前体,然而目前其工业生产过程受困于生产效率低和环境污染严重等问题。该研究中,作者在植物甾醇的降解途径中发现一个新颖的具有双功能作用的还原酶mnOpccR,该酶既可以以四电子的方式还原3-oxo-4-pregnene-20-carboxyl-CoA (3-OPC-CoA)形成20-hydroxymethyl pregn-4-ene-3-one (4-HBC),也可以以二电子的方式还原3-oxo-4-pregnene-20-carboxyl aldehyde (3-OPA)形成4-HBC。通过失活或者过表达新金色分枝杆菌(Mycobacterium neoaurum)中mnOpccR,可分别高效专一地实现4-AD和4-HBC的高产。再通过两步简单合成反应,4-HBC可高效转化形成100 g级的PG。





Figure 2. 新金色分枝杆菌野生株和各突变菌株的降解产物。I,野生株;II,kstD基因失活菌株;III,kstD和hsd4A共失活菌株;IV,kstD,chsE1-E2,chsH1-H2失活菌株;V,kstD和mnOpccR共失活菌株。
为了提高4-HBC的产量,作者首先将该代谢途径中唯一的kstD失活,结果显示其确实只产4-AD及4-HBC(figure 2, II)。但是当失活hsd4A,目的是阻断7流向8 路径以引导代谢流向retro-aldol消除路径,进而转化为4-HBC。然而,实验结果是对4-HBC的形成并无影响,作者推测这可能是存在另一条或多条与hsd4A功能互补的代谢途径(figure 2, III)。通过失活hsd4A并没有达到积累4-HBC的结果,这促使作者将焦点转移到4-HBC本身的合成途径。于是,作者又猜测10被还原后可能形成4-HBC,尽管目前CoA还原酶只接受alkyl-acyl-CoA作为底物,作者大胆尝试用敲除kstD基因的菌株mJTU1细胞裂解液体外催化10,成功得到12%4-HBC,88% 4-AD,较mJTU1发酵液(17%:83%)中略低,说明部分4-HBC确实是通过10的还原而得(figure 3)。考虑到4-HBC代谢途径处于10还原步骤之前,于是作者又同时失活3-OPC-CoA脱氢酶(ChsE1-E2)和3-OPDC-CoA羟化酶(ChsH1-H2)以阻断4-AD的形成引导代谢流向4-HBC路径。出乎意料的,结果显示虽然4-HBC的产量提高了12%,但是更主要的则是产生了两个新的甾体类化合物11和12,作者推测这可能是高浓度的10激活了产生11和12的沉默基因(figure 2, IV)。

Figure 3. mJTU1细胞裂解液的生化反应

Figure 4. mnOpccR的催化3-OPC-CoA的生化实验。I,II,III分别为标准品;IV, mnOpccR催化3-OPC-CoA;V,mnOpccR催化3-OPA;VI,mnOpccR-NtD催化3-OPC-CoA;VII,mnOpccR-NtD催化3-OPA;VIII,mnOpccR-S375A-G377A-R398A催化3-OPC-CoA;IX,mnOpccR-S375A-G377A-R398A催化3-OPA;X,msOpccR催化3-OPC-CoA;XI,msOpccR催化3-OPA;XII,msOpccR-NtD-mnOpccR-CtD催化3-OPC-CoA。
目前mnOpccR类还原酶的催化机制尚不清楚,特别是其N端和C端的催化机制。作者分析发现其N端(NtD)和C端(CtD)都含有高度保守的吡啶核苷酸结合区域,且其N端(NtD)与MxaA-Re(NRPS)有30%的同源性,C端(CtD)与Acr1(acyl-CoA 还原酶)有42%的同源性。为了解其催化机制,作者试图单独分别过表达NtD和CtD,遗憾的是无法获得CtD可溶性蛋白。值得庆幸的是,作者得到了NtD蛋白以及使CtD端NADPH结合位点失活的全酶。体外酶催化显示,这两种酶都不能还原10,但可还原9,说明N端负责醛的还原而C端应该负责CoA底物的还原。由于10还原产生4-HBC的过程中无9的产生,说明9可能是通过C端和N端的中间通道运输。此外,分析发现这类型酶广泛分布于分枝杆菌中,过表达相似基因msOpccR (同源性78%)发现,其不能将10转化为4-HBC,却对9具有催化作用。当将mnOpccR中的CtD置换到msOpccR中,发现其恢复了对10的还原作用,这也就证明了CtD确实负责CoA底物的还原。(figure 4)基于上述结论,作者猜测,这类型酶的催化模式可能有两种:一,以四电子方式进行,CoA底物首先进入CtD催化口袋,形成醛类中间体,而后通过C-端催化口袋和N-端催化口袋中间通道进入NtD,进而催化形成醇类终产物;二,醛类中间体直接进入N-端催化口袋,发生两电子还原反应,或者醛类中间体先进入CtD,经中间通道运输到NtD。

Figure 5. 新金色分枝杆菌各突变株中4-HBC的形成情况。I,mJTU1菌株;II,mJTU1菌株中加入强启动子pG13的菌株mJTU5;III,mJTU5菌株敲除hsd4A的菌株mJTU8;IV,mJTU1菌株敲除hsd4A和hsd4A2的菌株。

感谢瞿旭东教授课题组对本号的支持,感谢该课题组提供本文稿件支持!
