动物用agomir产品案例应用策略解析丨含动物造模、实验处理、给药方式、给药剂量……
MicrONTM miRNA agomir是经过特殊化学修饰的miRNA激动剂,可直接注射于动物体内,用于模仿内源性miRNA。相比细胞用miRNA mimic,动物用miRNA agomir具有更高的稳定性和miRNA活性,更易通过细胞膜、细胞间隙而富集于靶细胞。在动物实验中agomir通常可以通过系统或局部注射等方法进行给药。关于科研实验中的给药方式一般没有固定的模式,给药方式应该根据具体的实验灵活设计,在实际实验过程中不断调整调整和优化。
本期文章小编给大家带来的是关于动物用miRNA agomir给药方式的客户应用案例,我们也将不定时地更新更多miRNA agomir在动物体内的应用策略,希望能够对正在或即将要做动物实验的各位小伙伴有一定的帮助!
锐博生物miRNA agomir
中文名:miRNA激动剂
功能:模仿内源性的miRNA
纯化方式:in vivo(Standard in vivo)
稳定性:经特殊化学修饰,稳定性高
给药方式:局部给药(1-10 nmol);系统给药(5-20 nmol)
作用方式:双链RNA,作用链为正义链,通过模拟miRNA进入miRISC复合物来调节靶mRNA的表达而发挥作用
应用案例1:
Journal of Hepatology(IF20.583)丨Multigenerational maternal obesity increases the incidence of HCC in offspring via miR-27a-3p
疾病模型:肥胖、肝细胞癌(怀孕的C57BL/6雌性小鼠尾静脉注射PBS或miR-27a-3p agomir,p15雄性子代断奶后维持NC和高脂饮食(HFD),并通过腹腔注射二乙基亚硝胺DEN以诱导HCC)
动物模型:高脂饮食诱导的多代肥胖模型(分为4组,分别为Control+NC组、Agomir+NC组、Control+HFD组和Agomir+HFD组。以NC喂养的雄性小鼠作为对照)
给药方式:尾静脉注射
给药剂量:在E12.5时,每只小鼠5μmol;E14.5至E18.5期间,每只小鼠3μmol
给药频率:在E12.5时注射1次,E14.5至E18.5期间每隔一天注射1次

Fig1.母亲注射了miR-27a-3p agomir的后代中,无论饮食如何,肿瘤数量显著增加;且HFD条件下的子代肿瘤负担更重
参考文献:Sun Y, Wang Q, Zhang Y, et al. Multigenerational maternal obesity increases the incidence of HCC in offspring via miR-27a-3p[J]. Journal of Hepatology, 2020, 73(3): 603-615.
应用案例2:
Advanced Science(IF15.844)丨Targeting YAP1/LINC00152/FSCN1 Signaling Axis Prevents the Progression of Colorectal Cancer
疾病模型:结直肠癌(首先,用miR-185-3p agomir、miR-632 agomir和control agomir处理LINC00152稳定过表达或含空载的HCT116细胞24h,然后将2×106个细胞的单细胞悬液接种于小鼠的背侧或注射于小鼠的尾静脉)
动物模型:异种移植裸鼠模型、“尾静脉-肺转移”裸鼠模型(随机分为4组,分别为agomir NC组、LINC00152过表达+agomir NC组、LINC00152过表达+ miR-185-3p agomir组和LINC00152过表达+ miR-632 agomir组)
给药方式:瘤内注射、尾静脉注射
给药剂量:150 µL, 200 × 10−9 M
给药频率:瘤内注射1次(第15天),尾静脉注射2次(第30天和第45天)

Fig2. 注射miR-185-3p和miR-632 agomirs降低了裸鼠移植瘤的生长和转移瘤的肺致瘤性
参考文献:Ou C, Sun Z, He X, et al. Targeting YAP1/LINC00152/FSCN1 signaling axis prevents the progression of colorectal cancer[J]. Advanced Science, 2020, 7(3): 1901380.
应用案例3:
Molecular Cancer(IF15.302)丨LINC00173.v1 promotes angiogenesis and progression of lung squamous cell carcinoma by sponging miR-511-5p to regulate VEGFA expression
疾病模型:肺鳞状细胞癌(至少6-8只4-6周龄BALB/c-nu小鼠,每组随机分配不同体重的小鼠。移植肿瘤实验,将1-4×106 个NCI-H1975细胞皮下注射接种于裸鼠腹股沟褶,以构建异种移植裸鼠模型。7天后,NCI-H1975–LINC00173.v1接种小鼠随机分为3组进行后续试验)
动物模型:异种移植裸鼠模型(随机分为3组,分别为贝伐单抗组、agomir-511-5p组和对照组)
给药方式:腹腔注射
给药剂量:10 μmol
给药频率:每周1次,共4周

Fig3. 注射agomir-511-5p可有效抑制LINC00173.v1过表达的NCI-H1975细胞的致瘤能力,甚至达到与贝伐单抗治疗相当的水平
参考文献:Chen J, Liu A, Wang Z, et al. LINC00173. v1 promotes angiogenesis and progression of lung squamous cell carcinoma by sponging miR-511-5p to regulate VEGFA expression[J]. Molecular cancer, 2020, 19: 1-19.
应用案例4:
Nature Communications(IF12.121)丨miR-135a-5p mediates memory and synaptic impairments via the Rock2/Adducin1 signaling pathway in a mouse model of Alzheimer’s disease
疾病模型:阿尔茨海默病(雄性APP/PS1小鼠购买于Jackson实验室,选择8月龄APP/PS1小鼠进行agomir注射,因为9月龄小鼠的记忆障碍明显)
动物模型:8月龄APP/PS1小鼠模型(实验组:注射miR-135a-5p agomir;对照组:注射scramble agomir)
给药方式:海马体注射
给药剂量:/
给药频率:将miR-135a-5p agomir (Ago)或scramble (Scr)注射到8月龄APP/PS1小鼠或野生型同窝幼崽的CA1区域。4周后,对小鼠进行Morris水迷宫实验、电生理记录、western blotting和高尔基染色。

Fig4. 海马体注射miR-135a-5p agomir (Ago)可以挽救AD小鼠的记忆损伤
参考文献:Zheng K, Hu F, Zhou Y, et al. miR-135a-5p mediates memory and synaptic impairments via the Rock2/Adducin1 signaling pathway in a mouse model of Alzheimer’s disease[J]. Nature communications, 2021, 12(1): 1-16.
应用案例5:
Theranostics(IF8.577)丨Human umbilical cord-derived mesenchymal stem cell therapy ameliorates lupus through increasing CD4+ T cell senescence via MiR-199a-5p/Sirt1/p53 axis
疾病模型:系统性红斑狼疮(雌性MRL/lpr小鼠购买于上海斯莱克实验动物有限责任公司,选择17周龄MRL/lpr小鼠模型进行agomir注射)
动物模型:MRL/lpr狼疮小鼠模型(每组6只,实验组:注射miR-199a-5p agomir;对照组:注射agomir NC)
给药方式:尾静脉注射
给药剂量:20nmol(agomir稀释于0.2ml生理盐水中)
给药频率:每4天一次,连续4周

Fig5. 尾静脉注射MiR-199a-5p agomir可改善MRL/lpr小鼠的疾病表型和免疫紊乱
参考文献:Cheng T, Ding S, Liu S, et al. Human umbilical cord-derived mesenchymal stem cell therapy ameliorates lupus through increasing CD4+ T cell senescence via MiR-199a-5p/Sirt1/p53 axis[J]. Theranostics, 2021, 11(2): 893.
应用案例6:
JCI Insight(IF6.206)丨Epithelial miR-206 targets CD39/extracellular ATP to upregulate airway IL-25 and TSLP in type 2-high asthma
疾病模型:哮喘(采用HDM敏化和激发的方法建立动物模型。即雌性C57BL/6小鼠在第0、7和14天通过腹腔注射100μL冻干HDM提取物溶液(0.1 mg/mL)和Al(OH)3佐剂,并在第21、22和23天鼻腔给药40μL HDM溶液(3 mg/mL)或生理盐水。第20天和第22天鼻腔给药miR-206 agomir、对照agomir)
动物模型:变应性气道炎症小鼠模型(实验组:miR-206 agomir处理;对照组:control agomir处理)
给药方式:鼻腔给药
给药剂量:5nmol(agomir稀释于40μL生理盐水中)
给药频率:第20天、22天给药

Fig6. 鼻腔给药miR-206 agomir显著抑制了HDM诱导的Cd39表达,并进一步增强了HDM诱导的ATP浓度的增加
参考文献:Zhang K, Feng Y, Liang Y, et al. Epithelial microRNA-206 targets CD39/extracellular ATP to upregulate airway IL-25 and TSLP in type 2-high asthma[J]. JCI insight, 2021.
应用案例7:
Gastroenterology(IF17.373)丨MicroRNAs 15A and 16–1 Activate Signaling Pathways That Mediate Chemotaxis of Immune Regulatory B cells to Colorectal Tumors
疾病模型:结直肠癌(通过氧化偶氮甲烷加右旋糖酐硫酸酯钠[ DSS ]诱导小鼠结直肠癌病变,即7周龄雌性WT或KO小鼠[ MIR15A和MIR16-1缺失 ]腹腔注射10 mg/kg bw的氧化偶氮甲烷,阴性对照注射0.9% NaCl溶液。5天后,在饮用水中以2.5%的最终浓度给药DSS,持续7天,然后是14天的正常饮水。此过程重复3次。)
动物模型:CRC小鼠(实验组:注射MIR15A和MIR16-1 agomir;对照组:注射agomir NC)
给药方式:静脉注射
给药剂量:5 nmol(agomir稀释于0.1ml磷酸盐缓冲盐水中)
给药频率:每4天一次,连续注射15次

Fig7. 注射MIR15A和MIR16-1 agomir的小鼠肿瘤生长更加缓慢
参考文献:Liu R, Lu Z, Gu J, et al. MicroRNAs 15A and 16–1 activate signaling pathways that mediate chemotaxis of immune regulatory B cells to colorectal tumors[J]. Gastroenterology, 2018, 154(3): 637-651. e7.
应用案例8:
Nature Communications(IF12.121)丨CircAnks1a in the spinal cord regulates hypersensitivity in a rodent model of neuropathic pain
疾病模型:采用L5/L6脊神经结扎的方法制备大鼠神经性疼痛模型。在注射戊巴比妥钠(50 mg kg-1,i.p.)后,将聚乙烯10(PE10)导管植入L5/L6椎间蛛网膜下腔中;导管尖端定位在L4–L6脊髓节段水平之间。然后使大鼠恢复5天。表现出后肢麻痹或瘫痪的动物被排除在研究之外。
动物模型:SNL(脊神经结扎)处理大鼠(实验组:注射agomir或antagomir;对照组:注射agomir control或antagomir control)
给药方式:鞘内注射
给药剂量:1nmol/d agomir;1nmol/d antagomir
给药频率:每天一次,连续注射5天

图8. CircAnks1a通过靶向miR-324-3p调控VEGFB的表达
参考文献:Zhang S B, Lin S Y, Liu M, et al. CircAnks1a in the spinal cord regulates hypersensitivity in a rodent model of neuropathic pain[J]. Nature communications, 2019, 10(1): 1-16.